轉基因大豆MON87705品系熒光PCR試劑盒

【產(chǎn)品名稱】

通用名稱：轉基因大豆MON87705品系熒光PCR試劑盒

Name：Transgenic soybean MON87705 line fluorescent PCR kit

【包裝規(guī)格】50T/盒

【預期用途】

本試劑盒適用于檢測轉基因植物的 MON87705 基因，用于篩查待檢測植物中是否含有 MON87705 成分。其檢測結果僅供參考。

【檢驗原理】

本試劑盒用國家標準的 MON87705 特異性引物和探針，用熒光 PCR 技術進行轉基因成分的檢測。

【試劑組成】

說明：不同批號的試劑盒組分不可交互使用。

【儲存條件及有效期】

-20℃±5℃，避光保存、運輸、反復凍融次數(shù)不超過 5 次，有效期 12 個月。

【適用儀器】

ABI 、安捷倫 MX3000P/3005P、LightCycler、Bio-Rad、Eppendorf 等系列熒光定量 PCR 檢測儀。

【標本采集】

稱取 200g 樣品。

【保存和運輸】

上述標本短期內(nèi)可保存于-20℃，長期保存可置-70℃，但不能超過 6 個月，標本運送應采用 0℃冰壺。

【使用方法】

1.  樣品處理（樣本處理區(qū)）

1.1  樣本前處理

固體樣本：用粉碎機或冷凍研磨儀將樣品研磨至細粉狀。

1.2  DNA 提取

對于固體標本，DNA 的提取可以采用 SN/T 2584-2010 中推薦的方法：

1)  每個樣品取 2 個平行管。稱取 200mg 粉碎的樣品，加入 1mL 預冷至 4℃的抽提液，劇烈搖動混勻后，在冰上靜止 5min，4℃條件下 10000g 離心 15min，棄上清液；

2)  加入 600μL 預熱至 65℃的裂解液，充分重懸沉淀，在 65℃恒溫保持 40min，期間顛倒混勻 5 次；

3)  室溫條件下10000g 離心10min，取上清液轉移至新離心管中，加入5μLRNAseA， 37℃恒溫 30min，分別用等體積苯/酚：異戊醇溶液和三氯jia烷：異戊醇溶液各抽提一次；

4)  室溫條件下，10000g 離心 10min，取上清液至新離心管，加入三分之二體積的異丙醇，十分之一體積的 3mol/L 的乙酸鈉溶液（pH=6.5），-20℃放置 2-3h；

5)  在 4℃條件下，10000g 離心 15min，棄上清液，用 70%乙醇洗滌沉淀一次，倒出乙醇，晾干沉淀；

6)  加入 50μL TE（pH8.0）溶解沉淀，所得溶解即為樣品 DNA 溶液。也可使用等效的 DNA/提取試劑盒。

油脂樣本請直接選用市售油脂 DNA/提取試劑盒，按說明操作。

2.  試劑配制（試劑準備區(qū)）

根據(jù)待檢測樣本總數(shù)，設所需要的 PCR 反應管管數(shù)為 N(N=樣本數(shù)+1 管陰性對照+1 管陽性對照；樣品每滿 7 份，多配制 1 份)，每測試反應體系配制如下表：

3.  加樣（樣本處理區(qū)）

將步驟 1 提取的 DNA、陽性質控品、陰性質控品各取 4μL，加入相應的反應管中，蓋好管蓋，混勻，短暫離心。

4.  PCR 擴增（核酸擴增區(qū)）

4.1   將待檢測反應管置于熒光定量 PCR 儀反應槽內(nèi)；

4.2   設置好通道、樣品信息，反應體系設置為 25μL；熒光通道選擇： 檢測通道

（Reporter Dye）FAM， 淬滅通道（Quencher Dye）選擇 NONE，請勿選擇ROX 參比熒光。

4.3   推薦循環(huán)參數(shù)設置：

5.結果分析判定

5.1  結果分析條件設定

設置 Baseline 和 Threshold：一般直接按機器自動分析的結果分析，當曲線出現(xiàn)整體傾斜時，根據(jù)分析后圖像調(diào)節(jié) Baseline 的 start 值(一般可在 3~15 范圍內(nèi)調(diào)節(jié))、stop 值(一般可在 5~20 范圍內(nèi)調(diào)節(jié))，以及 Threshold 的 Value 值(上下拖動閾值線至高于陰性對照)，重新分析結果。

5.2  結果判斷

陽性：檢測通道 Ct 值≤35，且曲線有明顯的指數(shù)增長曲線；

可疑：檢測通道 35<Ct 值≤38，建議重復檢測，如果檢測通道仍為 35<Ct 值≤38，且曲線有明顯的增長曲線，判定為陽性，否則為陰性；

陰性：樣本檢測結果 Ct 值>38 或無 Ct 值。

6.  質控標準

陰性質控品：Ct>38 或無 Ct 值顯示；

陽性質控品：擴增曲線有明顯指數(shù)生長期，且 Ct 值≤32； 以上條件應同時滿足，否則實驗視為無效。

7.  檢測方法的局限性

樣本檢測結果與樣本收集、處理、運送以及保存質量有關；

樣本提取過程中沒有控制好交叉污染，會出現(xiàn)假陽性結果；

陽性對照、擴增產(chǎn)物泄漏，會導致假陽性結果；

病原體在流行過程中基因突變、重組，會導致假陰性結果；

不同的提取方法存在提取效率差異，會導致假陰性結果；

試劑運輸，保存不當或試劑配制不準確引起的試劑檢測效能下降，出現(xiàn)假陰性或定量檢測不準確的結果；

本檢測結果僅供參考，如須確診請結合臨床癥狀以及其他檢測手段。

【注意事項】

所有操作嚴格按照說明書進行；

試劑盒內(nèi)各種組分使用前應自然融化，wan全混勻并短暫離心；

反應液應避光保存；

反應中盡量避免氣泡存在，管蓋需蓋緊；

使用一次性吸頭、一次性手套和各區(qū)專用工作服；

樣本處理、試劑配制、加樣需在不同區(qū)進行，以免交叉污染；

實驗完畢后用 10%次氯酸或 75%酒精或紫外燈處理工作臺和移液器；

試劑盒里所有物品應視為污染物對待，并按照《微生物生物醫(yī)學實驗室生物安全通則》進行處理。